FUNCIONALIDAD ESPERMÁTICA Y METABOLISMO CELULAR: MODELO BIOLÓGICO EN ESPECIES SILVESTRES Y DOMÉSTICAS
En el taller se contemplarán pruebas básicas de evaluación: viabilidad, integridad de membrana plasmática y acrosomal. Pruebas funcionales: Actividad mitocondrial y enzimas metabólicas claves para obtención de energía de la gameta. Inducción de capacitación y reacción acrosomal. Citometría de flujo como herramienta calidad espermática.
Carga horaria: 3 horas
Responsables de la programación y ejecución:
Dra Mariana Córdoba
Docentes/Investigadores participantes:
Lic. Adrian Sestelo
Dra. Mariana Córdoba
Dra. Silvina Fernández
Dr. Sergio Morado
Sr. Maximiliano Revilla
Contacto: jornadasinitra@fvet.uba.ar
Actividades a realizar:
Pruebas básicas de evaluación: viabilidad, integridad de membrana plasmática y acrosomal. Pruebas funcionales: Actividad mitocondrial y enzimas metabólicas claves para obtención de energía de la gameta. Inducción de capacitación y reacción acrosomal. Citometría de flujo como herramienta calidad espermática.
Temario: Evaluación por microscopia óptica: motilidad y vigor. Evaluación la viabilidad e integridad acrosomal a través tinciones vitales y contraste diferencial interferencial. Estudio de integridad de membranas: Hos Test. Evaluación de la actividad mitocondrial a través de citometria y microscopia fluorescente. Citometria para la evaluación espermática. Estudio enzimático de metabolismo celular como parámetros espermáticos indicadores de su funcionalidad en los procesos de capacitación y reacción acrosomal. Fertilización in vitro
Requisitos de los participantes: Graduados en carreras afines y alumnos de FCV-UBA con Medicina III aprobada. Manejo básico de microscopio estereoscópico y microscopio óptico.
Bibliografía:
1. Acrosin activity is regulated by protein kinase c and tyrosine kinase in bovine sperm acrosome exocytosis induced by lysophosphatidylcholine. Pérez Aguirreburualde MS, Fernández S and Córdoba M. Reproduction in Domestic Animals. 2012 47(6):915-20.
2. Capacitation and acrosome reaction induction on thawed Dama dama deer spermatozoa: glycine effect as cryopreservation diluent supplement. Fernández S, Sestelo A, Rivolta Miguel, and Córdoba M . Zoological Science 2013. 1-20.
3. Sperm changes and abnormalities during epididymal transit of armadillo in breeding period “. Filosa A., Pérez Marchetta G, Marquínez A., Rossi L, Merani S y Córdoba M. Biocell. Biocell 38 (3) 107 2014.
4. Seminal parameters, testosterone serum concentration and cryopreserved sperm function of fallow deer Dama dama in captivity”. Sestelo A, Fernández S, Rivolta M, Lombardo D and Córdoba M. Proceedings of a Deer Course for Veterinarians, Deer Branch NZVA No. 30 The joint Cervetec/Argentinian Association of Veterinary Experts in Cervids (AAVEC) ISSN 2230-2301 vol. 1-26 (2014).57-61
5. Hyaluronic acid as capacitation inductor: metabolic changes and membrane-associated adenylate cyclase regulation. Fernández S, Córdoba M. Reproduction in Domestic Animals 49(6): 941-946; (2014).
6. Cryopreserved bovine spermatozoa is capable to modulate its energy requirement depending on oxidative substrates to induce heparin capacitation in vitro”. Fernández, S, Córdoba, M. Invet Veterinary Research. vol 16 n° 2: 69-78; (2014).
7. Sperm characterization and identification of sperm sub-populations in ejaculates from pampas deer (Ozotoceros bezoarticus. F. Beracochea, J. Gil, A. Sestelo, J.J. Garde, J. Santiago-Moreno, F. Fumagalli, R. Ungerfeld Animal Reproduction Science. Volume 149, Issues 3-4, Pages 224–230. (2014)
8. Moro, LN; Sestelo, AJ; Salamone, DF. Evaluation of cheetah and leopard spermatozoa developmental capability after interespecific ICSI with domestic cat oocytes. Reprod Domest Anim. Vol. 49 (4): 693-700. (2014).
9. Bovine in vitro fertilization: in vitro oocyte maturation and sperm capacitation with heparin. Parrish JJ. Theriogenolgy 81: 67-73; (2014).
10. Progesterone causes metabolic changes involving aminotransferases and creatine kinase in cryopreserved bovine spermatozoa”, Fernández S, Córdoba M. Animal Reproduction Science, DOI http://dx.doi.org/10.1016/j.anireprosci.2015.11.016; (2015).
11. Tiger, bengal and domestic cat embryos produced by homoespecific and interespecific zona-free nuclear transfer. Moro, LN; Jarazo, J; Buemo, C; Hiriart, MI; Sestelo, AJ and Salamone, DF Reprod Domest Anim. Vol. 50: 849-857.(2015) Desarrollando tecnologías para la conservación de cérvidos autóctonos. Sestelo A, Fernández S, Filosa A, Córdoba M. Taurus ISSN 1515-3037.Año 18 Nº 70, mayo 2016.
12. Sperm Capacitation and Acrosome Reaction in Mammalian Sperm. Stival C, Puga Molina LC, Paudel B, Buffone MG, Visconti PE, Krapf D. Adv Anat Embryol Cell Biol 220: 93-106; (2016).
13. The ubiquitous hyaluronan: Functionally implicated in the oviduct? Rodriguez-Martínez H, Tienthai P, Atikuzzaman M, Vicente-Carrillo A, Rubér M, Alvarez-Rodriguez M.Theriogenology 86: 182-186; (2016).
14. Membrane-associated adenylate cyclase modulates lactate dehydrogenase and creatine kinase activities required for bull sperm capacitation induced by hyaluronic acid. Fernández S, Córdoba M. Animal Reproduction Science 179: 80-87; (2017).
