Coordinador: Dr. Daniel M. Lombardo
Lugar de Realización: Cátedra de Histología y Embriología.
Inscripción: Continua
Objetivos:
- CONOCER las principales aplicaciones de la técnica histológica en general e inmunohistoquímica en las diferentes áreas de las ciencias biomédicas.
- INTERPRETAR los fundamentos de la metodología utilizada en la rutina histológica e inmunohistoquímica.
- VALORAR las posibilidades (y limitaciones) del estudio morfológico y morfométrico e histológicos aplicables en biociencias.
- CONOCER los fundamentos de los instrumentos y equipamientos utilizados en la aplicación de la metodología histológica de rutina e inmunohistoquímica.
- COMPRENDER los fenómenos físico – químicos que ocurren en las reacciones histoquímicas que ocurren sobre diferentes sustratos biológicos.
- CAPACITAR a los pasantes en las destrezas teórico – prácticas mínimas que le permitan manejarse en un laboratorio de histología normal y patológica.
Actividades a Realizar:
UNIDAD I: Introducción a las técnicas de inmunohistoquímica: Generalidades. Aplicaciones. Condiciones de la muestra para inmunohistoquímica. Fijadores adecuados para IHQ.
Uso de tacos de histoteca para IHQ. La recuperación de antígenos: Sistema de microondeado con citrato de de sodio, sistema de olla a presión.
Los anticuerpos: Policlonales y monoclonales. Condiciones de almacenamiento y alicuotado.
UNIDAD II:
Técnica de inmunoperoxidasa, método directo, método indirecto. Métodos de la peroxidasa-antiperoxidasa (PAP). Métodos que utilizan la interacción Avidina-Biotina (AB): Método de la Avidina-Biotina, método del complejo Avidina-Biotina-Peroxidasa (ABC), Método de la Streptoavidina marcada (Labelled Streptavidin-Biotin) (LSAB).
Técnicas de Fosfatasa Alcalina (AP): Método de la Fosfatasa Alcalina-Antifosfatasa Alcalina (APAAP).
Métodos basados en el oro coloidal.
UNIDAD III:
Protocolo de la técnica LSAB. Aspectos prácticos: Desparafinización. Técnicas de Bloqueo de peroxidasas endógenas. Técnicas de bloqueo a uniones inespecíficas (con leche - BLOTTO, suero normal y sero albúmina bovina - BSA).
Condiciones de incubación del anticuerpo primario: Incubación rápida a temperatura ambiente, incubación lenta a 4ºC over nigth.
Incubación del anticuerpo secundario.
Detección con Diaminobencidina (DAB): Preparación de la DAB en fresco, revelado con DAB.
Montaje.
Protocolo de la técnica LSAB para cultivos y extendidos celulares.
UNIDAD IV:
Controles de la Técnica IHQ e ICQ. Controles de técnica: Control del anticuerpo primario, control del anticuerpo secundario. Controles positivos y negativos. Controles de tejido: positivo y negativo.
UNIDAD V: Valoración de las técnicas de IHQ e ICQ: Valoración subjetiva. Valoración semicuantitativa: Sistema H-SCORE. Valoración cuantitativa: Sistemas de medición por densidad óptica (DO) o transmitancia (TO). Manejo de Software.
Duración: 60 horas.
Cupo de Pasantes: 4 semestral.
Requisitos del Postulante:
Graduados de FCV públicas Nacionales: Sí
Graduados de FCV Privadas o Extranjeras: Sí
Becas para Docentes: Cupo anual 1
Mecanismos de Selección de los Pasantes:
Currículum Vitae y nota especificando la aplicación de la pasantía en su actividad Académica o profesional.
Modalidad de Realización: Martes, miércoles y viernes de 10:00hs a 18:00hs.
Está contemplada la modalidad intensiva.
Evaluación de los Pasantes: Evaluación teórico práctica.
Tipo de Certificación:
Certificado de Asistencia y Aprobación
El curso será evaluado por los participantes por medio de una encuesta que será entregada por el Área de Becas, Pasantías y Residencias.
Solicitud de Acreditación para Carrera de Posgrado: SI |