Coordinador: Dr. Daniel M. Lombardo
Lugar de Realización: Cátedra de Histología y Embriología.
Inscripción: Continua
Objetivos:
- CONOCER las principales aplicaciones de la técnica histológica en general e inmunohistoquímica en las diferentes áreas de las ciencias biomédicas.
- INTERPRETAR los fundamentos de la metodología utilizada en la rutina histológica e inmunohistoquímica.
- VALORAR las posibilidades (y limitaciones) del estudio morfológico y morfométrico e histológicos aplicables en biociencias.
- CONOCER los fundamentos de los instrumentos y equipamientos utilizados en la aplicación de la metodología histológica de rutina e inmunohistoquímica.
- COMPRENDER los fenómenos físico – químicos que ocurren en las reacciones histoquímicas que ocurren sobre diferentes sustratos biológicos.
- CAPACITAR a los pasantes en las destrezas teórico – prácticas mínimas que le permitan manejarse en un laboratorio de histología normal y patológica.
Actividades a Realizar:
UNIDAD I: Toma de muestra: Condiciones de la muestra al momento de la toma. Muestreo a campo. Muestreo en laboratorio. Métodos de muestreo. Muestras para histopatología y para citología.
Fijación: Métodos Físicos. Métodos químicos. Fundamentos. El recipiente para la fijación. El volumen del fijador. Tamaño de la muestra a fijar. Tiempo de la fijación. Mezclas fijadoras. Protocolo de fijación. Fijadores para microscopía electrónica. Detención de la fijación. Fijación con frío.
UNIDAD II: Procesamiento de la muestra fijada: Deshidratación, protocolos según tipo de muestra. Aclaración de la muestra. Inclusión en parafina / paraplast. Confección del taco. Factores que influyen en la calidad del corte. Inclusión en metacrilatos y resinas sintéticas para MO y para ME.
UNIDAD III: Corte: corte por micrótomo de deslizamiento y rotativo. Corte con crióstato. Cortes con ultramicrótomo para microscopía óptica y electrónica
UNIDAD IV: Coloración: Clasificación de los colorantes. Hematoxilina y eosina. Protocolo; desparafinado, hidratación, coloración. Coloración diferencial: tricrómicos. Coloración de lípidos. Histoquímica: PAS, Feulguen, coloración de Nissl. Otras coloraciones histoquímicas. Impregnaciones Argénticas.
UNIDAD V: Técnicas Citológicas: Toma de muestra en citología: Raspado o abrasión, sondajes – lavados, punciones, improntas, hisopados. Métodos de concentración celular. Procesamiento básico de una muestra líquida.. Factores que condicionan la conservación del material fresco. Técnicas básicas de coloración en citología: Papanicolaou (PAP), NMB, Hematoxilina – Shorr, otras técnicas. Citodiagnóstico práctico
Duración: 80 horas.
Cupo de Pasantes: 8 semestral.
Requisitos del Postulante:
Graduados de FCV públicas Nacionales: Sí
Graduados de FCV Privadas o Extranjeras: Sí
Becas para Docentes: Cupo anual 2
Mecanismos de Selección de los Pasantes:
Currículum Vitae y nota especificando la aplicación de la pasantía en su actividad Académica o profesional.
Modalidad de Realización: Martes, miércoles y viernes de 10:00hs a 18:00hs.
Está contemplada la modalidad intensiva.
Evaluación de los Pasantes: Evaluación teórico práctica.
Tipo de Certificación:
Certificado de Asistencia y Aprobación
El curso será evaluado por los participantes por medio de una encuesta que será entregada por el Área de Becas, Pasantías y Residencias.
Solicitud de Acreditación para Carrera de Posgrado: SI |
